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文檔簡介
1、研究目的: 1.AHI1蛋白和攝食的關系; 2.AHI1蛋白與5-HT2CR之間的關系。 材料與方法: 1.建立食欲增加的動物模型 1.1饑餓動物模型 30只8周齡雄性C57BL/6J小鼠,分三組,分別饑餓48h,24h,0h,期間可自由飲水。處死取下丘腦。Westernblotting和Real—TimePCR檢測AHI1的變化。 1.22-DG腹腔注射造成的饑餓模型 2
2、0只8周齡雄性C57BL/6J小鼠,分為2組,2-DG組2-DG(250mg/kginsaline,ip),對照組注射生理鹽水;2-DG(2-脫氧—D—葡萄糖)是一種碳水化合物代謝選擇性阻斷劑,注射后小鼠攝食增加,4個小時內作用明顯。監(jiān)測4個小時的攝食量,處死取下丘腦。Westernblotting和Real—TimePCR檢測AHI1的變化。 1.3STZ介導的1型糖尿病模型 0.1mol/l的枸櫞酸鈉和枸櫞酸1∶1,
3、調至PH值4.5,超凈臺內過濾,配制STZ溶液。20只8周齡雄性C57BL/6J小鼠,分為2組。一組注射STZ溶液(200mg/kgip),另一組注射枸櫞酸鈉緩沖液。一周內測2次血糖,均超過16.7mol/l即可以認為造模成功。處死取下丘腦。Westernblotting和Real—TimePCR檢測AHI1的變化。 1.42型糖尿病動物模型(db/db小鼠) 購買雄性成年db/db小鼠7只。對照組是性別年齡匹配的C57
4、BL/6J小鼠。取5只做westernblotting,2只做免疫組織化學。觀測小鼠下丘腦AHI1蛋白的改變,以及小鼠下丘腦各個核團AHI1蛋白量的改變。 2.降低下丘腦AHI1的表達觀察對體重攝食的影響 40只8周齡雄性C57BL/6J小鼠用siRNA沉默下丘腦攝食相關核團VMH等的AHI1表達來改變AHI1的含量,監(jiān)測一個月小鼠的攝食量、體重改變。 方法:8%水合氯醛100-150mg/kg體重進行動物麻醉,
5、按TheMouseBrain小鼠圖譜(2001,1997byACADEMICPRESS)前后-1.1mm,旁開±0.5mm,深度—5.5mm,腺病毒包裹的AHI1特異性shRNA(量1011pfu/ml),溶于PBS中,每側注射1μL。用腦立體定位儀及微量進樣器注射入雙側下丘腦腹內側核內,10min注射完,留針2min。對照組注射腺病毒包裹的scramble—shRNA(空載體)。 3.AHI1蛋白和5-HT2cR關系的研究
6、 3.1免疫熒光組織化學和免疫熒光細胞化學檢測共定位關系 8周齡雄性C57BL/6J小鼠心臟灌注處死,取腦組織,4%多聚甲醛浸泡充分后固定。固定結束后用30%蔗糖滲透,OCT冰凍包埋,制備8μm厚度的冰凍切片。用PBS搖動清洗切片10min。樣品用正常胎牛血清(PBS+10%FBS+0.2%Triton)室溫封閉2小時,與適當比例稀釋的一抗(抗AHI11:200和抗5-HT2cR1:8)于4℃孵育過夜。次日用磷酸鹽緩沖液(P
7、BS+1%BSA+5%Tween)漂洗4次,每次10分鐘,然后加適當比例稀釋的熒光標記二抗(先敷donkeyantiGoat488,室溫孵育1小時,再次充分漂沈。然后敷Goatantirabbit594,室溫孵育1小時,再次充分漂洗)。最后用DAPI染色并漂洗后,80%甘油—磷酸鹽緩沖液封片。培養(yǎng)小鼠下丘腦神經(jīng)元至14Div(dayinvitro),4%PFM—PB室溫固定30min,AbAHI11:300andAb5HT2cR1:8共
8、染。步驟如上。在激光共聚焦顯微鏡下觀察兩種分子的定位。 3.2免疫共沉淀檢測AHI1蛋白和5-HT2cR的相互結合關系 凍干的蛋白A—瓊脂糖珠(proteinA—sepharosebeads)在室溫下加bufferA溶脹30min或更長時間,切忌用任何攪拌器攪拌,每克干粉可溶到3-4ml水合凝膠。取適量蛋白A—beads用RIPA洗2次,并重懸于RIPA中備用;預冷離心機。取實驗老鼠,斷頭后2min內取完整腦組織。在研磨
9、器里加入RIPAbuffer進行勻漿(或簡短超聲裂解)。組織勻漿液在16000rpm,4℃,離心15min(S1)。用BCA試劑盒測S1樣品濃度,并調節(jié)終濃度為1mg/ml。依照每毫克S1蛋白加80μl50%beads量,混合S1和相應的50%蛋白A—sepharosebeads(可使用回收beads),然后,在4℃孵育1h,以減少非特異性結合。沉淀后,除去beads,然后加入AHI1(Cterminal)抗體到上清液(S2),4℃反復
10、顛倒混勻,過夜?;旌蟂2和新的50%蛋白A—sepharosebeads,室溫孵育2h,沉淀免疫復合物。離心,收集免疫沉淀,并用RIPAbuffer洗3次(選用300mMNaCl作為漂洗溶液)。免疫沉淀物和S2進行westernblotting分析SHT2cR和AHI1蛋白。 4.統(tǒng)計學分析 實驗結果的統(tǒng)計分析、灰度分析、數(shù)據(jù)制圖采用molecularDynamics,Graphadsoftware,SPSS11.0。實
11、驗數(shù)據(jù)符合正態(tài)分布者用平均值±標準差(n=有效樣本例數(shù))表示。首先對每組數(shù)據(jù)進行正態(tài)性、方差齊性檢驗然后采用隨機化配對資料均數(shù)的t檢驗,經(jīng)正態(tài)性檢驗三組數(shù)據(jù)采用單因素方差分析,P<0.05認為差異顯著(*),P<0.01認為差異較顯著(**)。 實驗結果: 1.食欲增加模型 1.1饑餓動物模型 饑餓組和正常組小鼠相比,westernblotting顯示AHI1蛋白在饑餓后增加(對照組VS饑餓24h組P<0
12、.05:對照組VS饑餓48h組P<0.05;饑餓24h組VS饑餓48h組P>0.05)。Real—TimePCR顯示饑餓后AHI1mRNA增加約50%和80%。 1.22-DG腹腔注射造成的饑餓模型 2-DG注射4h內藥物組小鼠比對照組小鼠攝食增加(P<0.05),westernblotting顯示AHI1蛋白增加(P<0.01),Real—TimePCR顯示下丘腦的AHI1mRNA增加約87%。 1.3STZ介
13、導的1型糖尿病模型 正常小鼠組與STZ造成的1型糖尿病小鼠組比較westernblotting顯示AHI1蛋白增加(P<0.01),Real—TimePCR顯示AHI1mRNA增加約60%。 1.42型糖尿病動物模型(db/db小鼠) 免疫組織化學和westenblotting顯示db/db小鼠組與正常小鼠組比較下丘腦的AHI1蛋白增加,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。 2.降低下丘腦AHI1的表達觀
14、察對體重攝食的影響 應用RNA干擾降低小鼠下丘腦AHI1的表達后,小鼠在RNA干擾后的兩周內攝食下降明顯(D4,D9-D13P<0.05;D5-D8P<0.01;D1-D3,D14-D30P>0.05),體重也有明顯下降(D3,D9-D12P<0.05;D4-D8P<0.01;D1-D2,D13-D30P>0.05)。 3.AHI1蛋白和5-HT2cR的共定位和相互結合關系研究 3.1小鼠下丘腦神經(jīng)元以及下丘腦組
15、織免疫組織化學熒光結果 完整的神經(jīng)元中AHI1蛋白和5HT2cR主要分布在胞體核周區(qū),突觸內有少量分布(特別是在突觸分支處)。神經(jīng)元胞體內AHI1蛋白成“stigmoidbody”狀分布,5HT2cR的分布與這些stigmoidbodies有部分重疊??梢娚Ⅻc狀共染。 小鼠腦組織免疫組織化學熒光顯示:ARC、LH、VMH內均可看到AHI1蛋白和SHT2cR散點狀共染。 3.2免疫共沉淀檢測AHI1蛋白和5-HT2
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